¹山东大学齐鲁医学院，山东 济南

²山东第一医科大学第一附属医院肝胆外科，山东 济南

³孝昌县第一人民医院检验科，湖北 孝感

收稿日期：2023年2月21日；录用日期：2023年3月16日；发布日期：2023年3月23日

摘要

目的：探讨miR-485-3p调控肝癌细胞系HepG2铁死亡的分子机制。方法：使用转染试剂transfect-mate分别转染miR-485-3p模拟物或抑制物至肝癌细胞HepG2中并通过qPCR验证转染效果。加入铁死亡诱导剂索拉非尼(SF)，通过CCK-8法检测肝癌细胞增殖水平。通过RT-qPCR验证铁死亡诱导剂作用下肝癌细胞内miR-485-3p表达水平。通过脂质过氧化物试剂盒(MDA)、C11-BODIPY、铁离子检测试剂盒、分别检测肝癌细胞内过氧化物、铁离子积累水平。Western blot测定转染miR-485-3p模拟物或抑制物后核受体共激活因子4 (NCOA4)的表达水平。结果：与“NC + SF”组相比，“Mimics + SF”组肝癌细胞活力减弱，“Inhibitor + SF”组肝癌细胞活力显著增强。qPCR结果显示索拉非尼诱导后，肝癌细胞内miR-485-3p表达水平较对照组升高。“Mimics + SF”组细胞内丙二醛(MDA)、铁离子水平较“NC + SF”组显著升高。共聚焦显微镜下观察到 “Mimics + SF”组肝癌细胞内ROS累积显著，“Inhibitor + SF”组相对较低。Western blot结果显示转染miR-485-3p模拟物后肝癌细胞内NCOA4表达增强，而转染抑制物后NCOA4表达显著下降。结论：miR-485-3p可以通过调控NCOA4影响肝癌细胞铁死亡。

关键词

肝细胞癌，miR-485-3p，核受体共激活因子4，铁死亡

Research on Molecular Mechanism of miR-485-3p Regulation on Ferroptosis in Hepatocellular Carcinoma Cells

Wensheng Sun¹, Zhiqian Liu², Xinzhang Li¹, Jikang Jiang³, Jie Li^1*

¹Cheeloo College of Medicine, Shandong University, Jinan Shandong

²Department of Hepatobiliary Surgery, The First Affiliated Hospital of Shandong First Medical University, Jinan Shandong

³Clinical Laboratory Department, Xiaochang First People’s Hospital, Xiaogan Hubei

Received: Feb. 21^st, 2023; accepted: Mar. 16^th, 2023; published: Mar. 23^rd, 2023

ABSTRACT

Objective: To investigate the molecular mechanism of miR-485-3p on ferroptosis of hepatocellular carcinoma cell line HepG2. Methods: Transfect-Mate was used to transfect miR-485-3p mimics or inhibitors into HepG2 cells, and the transfection effect was verified by qPCR. Adding Sorafenib (SF) as ferroptosis inducer, the proliferation of hepatocellular carcinoma cells was detected by CCK-8 assay. RT-qPCR was used to verify the expression level of miR-485-3p in hepatocellular carcinoma cells under the effect of ferroptosis inducer. The accumulation levels of superoxide and iron in HCC cells were detected by Lipid Peroxidation MDA Assay Kit (MDA), C11-BODIPY and Iron assay Kit respectively. Western blot was used to determine the expression level of nuclear receptor coactivator 4 (NCOA4) after transfection with miR-485-3p mimic or inhibitor. Results: Compared with “NC + SF” group, the viability of hepatocellular carcinoma cells in “Mimics + SF” group was decreased, while that in “Inhibitor + SF” group was significantly increased. qPCR results showed that after sorafenib induction, the expression level of miR-485-3p in hepatocellular carcinoma cells was higher than that in the control group. The levels of malondialdehyde (MDA) and intracellular iron in the “Mimics + SF” group were significantly higher than those of “NC + SF” group. It was observed under confocal microscope that ROS accumulation in hepatocellular carcinoma cells of the “Mimics + SF” group was significant, while the “Inhibitor + SF” group was relatively low. Western blot results showed that the expression of NCOA4 in hepatocellular carcinoma cells was enhanced after transfection with miR-485-3p mimics, while the expression of NCOA4 was significantly decreased after transfection with inhibitor. Conclusion: miR-485-3p affects ferroptosis in hepatocellular carcinoma cells by regulating NCOA4.

Keywords:Hepatocellular Carcinoma, miR-485-3p, Nuclear Receptor Coactivator 4, Ferroptosis

Copyright © 2023 by author(s) and Hans Publishers Inc.

This work is licensed under the Creative Commons Attribution International License (CC BY 4.0).

http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

1. 引言

据国家癌症中心数据，我国肝癌的发病率排名第四，死亡率排名第二，仅次于肺癌 [1]。因此寻找新的潜在的治疗肝癌的靶点具有非常重要的意义。铁死亡是一种以脂质过氧化物、铁离子累积为主要特征的程序性死亡，现有研究表明，铁死亡与肝癌的发展有关 [2]。miR-485-3p位于染色体14q32.31，研究表明miR-485-3p在结直肠癌 [3] [4] 、宫颈癌 [5] 、和乳腺癌 [6] 等恶性肿瘤中可以作为肿瘤抑制因子。相反，研究显示miR-485-3p可作为促癌因子在胃癌 [7] 和肝癌中发挥作用。在肝癌中，miR-485-3p能与LinC00052形成互补碱基对，降低神经营养酪氨酸激酶受体(NTRK3)对肝癌细胞增殖和转移的抑制作用，从而促进肝癌细胞增殖和转移 [8]。另有研究显示，在HepG2细胞中，敲除miR-485-3p可以相对提高MAT1A的mRNA和蛋白质水平，MAT1A的表达水平与肝细胞癌的发生呈负相关，MAT1A表达升高，抑制了肝癌细胞生长和侵袭 [9]。有研究证实miR-485-3p可以通过介导铁转运蛋白影响细胞内铁的代谢，过表达miR-485-3p能降低铁转运蛋白的活性，造成细胞内铁累积 [10]。然而，miR-485-3p是否参与调控肝癌细胞铁死亡，仍待进一步研究。本研究以肝癌细胞系HepG2为研究对象，探讨miR-485-3p在肝癌细胞铁死亡过程中的影响及作用机制，为肝癌的综合治疗提供潜在的靶点。

2. 材料与方法

2.1. 主要材料和试剂

肝癌细胞系HepG2购自塞库生物。模拟物(hsa-miR-485-3p mimics)、抑制物(hsa-miR-485-3p inhibitor)、阴性对照(Negative control)、转染试剂(transfect-mate)均购自上海吉玛制药技术有限公司基因。MEM培养基、胰蛋白酶-EDTA消化液、青链霉素混合液、PBS均购自上海源培生物科技股份有限公司。胎牛血清购自Gibco美国赛默飞世尔科技有限公司。RT-qPCR试剂盒购自湖南艾科瑞生物工程有限公司公司。脂质氧化(MDA)检测试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司。铁离子比色法检测试剂盒采购于北京普利莱基因技术有限公司。引物采购于上海吉玛制药技术有限公司。C11-BODIPY581/591购自武汉爱博泰克生物科技有限公司。GAPDH抗体、NCOA4抗体、FTH1抗体、SLC7A11抗体、抗体均购自美国Cell Signaling Technology公司(CST)。TBST缓冲液、30%丙烯酰胺、过硫酸铵(APS)、四甲基乙二胺(TEMED)均购自武汉塞维尔生物科技有限公司。

2.2. 方法

2.2.1. 细胞培养与分组

肝癌细胞系HepG2在含10%胎牛血清及1%青链霉素混合液的MEM培养基中培养。细胞培养箱保持5% CO₂、37℃的恒温条件。细胞复苏、细胞传代均在生物安全柜中进行。细胞每培养15代，更换1次细胞。HepG2细胞共分为6组，分别为“NC + DMSO”组(阴性对照组)、“NC + SF”组(索拉非尼诱导组)、“Mimics + DMSO”组(miR-485-3p过表达组)、“Mimics + SF”组(miR-485-3p过表达 + 索拉非尼诱导组)。“Inhibitor + DMSO”组(miR-485-3p抑制组)、“Inhibitor + SF”组(miR-485-3p抑制 + 索拉非尼诱导组)。

2.2.2. CCK-8 (Cell Counting Kit-8)实验

细胞活力检测：转染后的HepG2细胞，按照细胞传代步骤进行消化吹打混匀，显微镜下计数(5 × 10³/well)接种于96孔板中，总培养基体积100 μL。24 h后加药，加药处理24 h后更换培养基，避光条件下加入提前配制好的CCK-8检测试剂，总体积100 μL，培养箱中孵育2 h。用酶标仪测定450 nm处的吸光度值，记录实验数据。

2.2.3. 克隆形成实验

将转染处理过的HepG2细胞(6 × 10²/well)接种于12孔板中。细胞在添加10%胎牛血清的培养基中培养2周，每4天更换一次培养基。待形成肉眼可见细胞团时，加药处理24 h，室温下用4%的多聚甲醛细胞固定液固定细胞20 min，然后用0.1%的结晶紫染色。双蒸水冲洗3~5次，自然晾干后拍照保存。

2.2.4. PCR实验

预先处理好的细胞清洗3遍，提取细胞总RNA。测定RNA浓度后，参照产品说明书反转录生成cDNA，以上操作均在冰上进行。使用伯乐CFX-96荧光定量PCR仪行实时荧光定量PCR。2^−ΔΔCt法计算miRNA实时水平。

2.2.5. 丙二醛(MDA)检测

裂解液充分裂解细胞后，4℃ 12,000 r/min离心10 min，取上清液。加入配制好的MDA检测工作液，溶液充分混匀，100℃孵育15 min，水浴冷却至室温，室温1000 r/min离心10 min，最后取200 μL样品加入96孔板中，每样本重复3次，酶标仪532 nm波长测定吸光度。依据标准浓度曲线及样品蛋白浓度计算细胞内MDA水平。

2.2.6. 铁离子检测

向培养好细胞的6孔板中加入400 μL/孔铁离子检测试剂裂解液，室温下置于摇床上裂解2 h充分裂解细胞。吸取样品至1.5 ml离心管，根据说明书加入各组样品及所需试剂，充分混匀，60℃孵育1 h，冷却至室温后瞬时离心，加入30 μL铁离子检测剂，室温孵育30 min，取200 μL于96孔板，550 nm测定吸光度值。依据标准浓度曲线及样品蛋白浓度计算细胞内铁离子水平。

2.2.7. C11-BODIPY实验

C11-BODIPY用于检测细胞内脂质过氧化。HepG2细胞(15 × 10⁴/well)六孔板种板，细胞融合度40%左右进行转染，转染后24 h加药，加药处理24 h后用含50 µmol/L C11-BODIPY试剂培养基按说明书进行培养，所得各组样品用激光共聚焦显微镜进行测定。

2.2.8. Western Blot实验

RIPA裂解细胞20 min后，刮匙刮下细胞，转移至1.5 mL样品管中。4℃离心机12,000 r/min离心15 min，取上清液提取细胞总蛋白。使用BCA试剂盒测定细胞蛋白浓度，按照1:4体积比添加蛋白电泳上样缓冲液充分混匀后，95℃金属浴中加热5 min，−20℃保存备用。取10 μg蛋白上样，电泳80 V、30 min，120 V、60 min，转膜。脱脂牛奶封闭2 h。TBST缓冲液清洗条带3遍，孵育一抗过夜。所用抗体均按照说明书1:1000稀释。二抗1:3000稀释，常温下孵育1 h，TBST缓冲液清洗条带3遍。加入超敏显影液，显影仪下发光显影。

2.3. 统计学处理

所获数据应用GraphPad Prism 8软件进行统计分析。计量资料以x ± s表示，两独立样本间差异的比较采用独立样本t检验。所有实验均重复3次。P < 0.05为差异具有统计学意义。

3. 结果

3.1. miR-485-3p对HepG2细胞铁死亡的影响

通过CCK-8实验测定加入索拉非尼前后肝癌细胞的活力，结果显示“Mimics + DMSO”组细胞活力相比“NC + DMSO”组明显升高，而“Mimics + SF”组肝癌细胞活力相比于“NC + SF”组显著降低(图1(a))。细胞克隆形成实验结果显示：在索拉非尼的诱导下，miR-485-3p表达增强后，HepG2的细胞活力显著下降，而敲低miR-485-3p后，HepG2的细胞活力明显增强(图1(b))。PCR结果显示，索拉非尼诱导组的miR-485-3p表达水平较NC组显著升高(图1(c))。这些结果提示miR-485-3p在调控肝癌细胞铁死亡中发挥了作用。我们通过检测细胞内铁离子水平、丙二醛(MDA)水平发现“Mimics + SF”组的MDA和铁离子水平较“NC + SF”组明显升高(图1(d)、图1(e))，“Inhibitor + SF”组铁离子水平较“NC + SF”组明显降低(图1(f))。共聚焦显微镜下观察到，索拉非尼诱导后的各组细胞ROS水平均有明显升高；且“Mimics + SF”组荧光强度显著高于“NC + SF”组，而“Inhibitor + SF”组细胞内ROS水平较“NC + SF”组下降(图1(g))。

图1. miR-485-3p对HepG2细胞铁死亡的影响。(a) 过表达miR-485-3p后细胞活力变化；(b) 不同组别细胞生长增殖情况；(c) RT-qPCR检测索拉非尼诱导后miR-485-3p的表达变化；(d) 不同组别细胞内丙二醛水平比较；(e) 过表达miR-485-3p后不同组别细胞内铁离子水平比较；(f) 抑制miR-485-3p后不同组别细胞内铁离子水平比较；(g) 共聚焦显微镜下观察各组细胞内ROS荧光信号，绿色荧光为氧化态，红色荧光为非氧化态^*P < 0.05, ^**P < 0.01

3.2. miR-485-3p调控HepG2细胞铁死亡的机制

为了进一步探索miR-485-3p调控肝癌细胞铁死亡的机制，我们预测了miR-485-3p在铁死亡通路中可能的靶基因，首先，我们使用铁死亡数据库FerrDb，分别筛选出“铁死亡驱动基因”和“铁死亡抑制基因”中评分前10位的基因，使用miRWalk数据库筛选得到上述基因中与miR-485-3p具有结合位点且评分前5位的基因：TP53、IREB2、NCOA4、FTH1、SLC7A11。本研究中选取NCOA4、FTH1、SLC7A11作为预选基因进行Western blot验证。结果显示：NCOA4、SLC7A11和FTH1在索拉非尼诱导铁死亡后表达都有所下降，但在非诱导铁死亡组过表达或抑制miR-485-3p后，只有NCOA4的表达量出现了显著变化。“Mimics + DMSO”组NCOA4表达量较“NC + DMSO”组明显升高，“Mimics + SF”组NCOA4表达量较“NC + SF”组也有轻度升高(图2(a)、图2(b))。“Inhibitor + DMSO”组较“NC + DMSO”组NCOA4表达量明显下降，“Inhibitor + SF”组较“NC + SF”组NCOA4表达量也有轻度下降(图2(c)、图2(d))。以上结果提示，miR-485-3p可以通过正向调控NCOA4的表达影响铁死亡。

图2. miR-485-3p正向调控NCOA4影响HepG2细胞铁死亡。(a) Western blot检测过表达miR-485-3p后铁死亡相关蛋白的表达变化；(b) 过表达miR-485-3p后不同组别细胞NCOA4表达的变化；(c) Western blot检测抑制miR-485-3p后铁死亡相关蛋白的表达变化；(d) 抑制miR-485-3p后不同组别细胞NCOA4表达的变化

4. 讨论

铁死亡是一种以铁离子、脂质过氧化物累积为主要特征的程序性死亡，与肿瘤、神经系统疾病、缺血–再灌注损伤、肾损伤、血液疾病等多种疾病的病理生理过程密切相关 [11]。铁死亡通过调节细胞内谷胱甘肽(GSH)、细胞内脂质过氧化物及其他相关物质的水平影响肝癌的发展 [12]。索拉非尼是第一个被批准用于肝癌晚期全身治疗的药物，研究认为索拉非尼作为铁死亡诱导剂，可以作用于system XC⁻，消耗肝癌细胞内谷胱甘肽，导致脂质过氧化，最终引起肝癌细胞铁死亡，其作用与erastin相似 [13]。然而在肝癌的临床治疗中，使用索拉非尼后很快便可产生耐药性。因此寻找新的铁死亡靶点对治疗肝癌具有重要意义。MicroRNAs (miRNAs)是一类进化上保守的非编码RNA，作为基因表达的转录后调节因子，参与细胞增殖、凋亡等多种生物学过程 [14]。过去的研究认为，miRNA的作用机制是作为负调控因子在胞质中与靶mRNA结合导致靶mRNA的翻译抑制或引起靶mRNA的降解 [15]。最新的研究证实，miRNA同样存在于细胞核中。核内miRNA可通过结合增强子，改变增强子的染色质状态，从而激活基因的转录表达 [16]。诺贝尔奖得主菲利普·夏普(Phillip Allen Sharp)最新的研究也证实miRNA激活理论 [17]，说明miRNA具有双重功能，在胞质中作为负向调控因子抑制基因表达，在细胞核内作为正向调控因子激活基因的转录。多项研究证实，miRNAs在肝癌的发生、发展中发挥着重要作用，并被认为可能成为新的肝癌治疗靶点 [18]。核受体共激活因子4 (Nuclear receptor coactivator 4, NCOA4)是一种选择性货物受体，与铁蛋白自噬关系紧密。NCOA4可以直接识别和结合FTH1介导铁蛋白自噬降解，释放大量游离铁，最终引起铁死亡 [19]。据报道，NCOA4表达水平同样受细胞内铁离子水平的影响，在铁充足的条件下，NCOA4可以与HERC2稳定结合。促进NCOA4蛋白酶体转换并降低细胞内NCOA4水平，促进铁蛋白积累和铁储存，在缺铁条件下，NCOA4-HERC2结合减弱，NCOA4的蛋白酶体转换减少导致NCOA4水平升高，加快铁蛋白自噬降解，从而增加游离铁 [20]。本研究中发现，过表达miR-485-3p后，促进了HepG2细胞的生长增殖，这与之前miR-485-3p促进肝癌进展的报道相符。有意思的是，我们研究发现在索拉非尼诱导下，过表达miR-485-3p后，HepG2细胞铁死亡指标出现了升高，抑制miR-485-3p的表达后细胞铁死亡指标出现了下降。说明miR-485-3p在HepG2细胞铁死亡的过程中起到了促进作用。过表达miR-485-3p后HepG2细胞中NCOA4的表达量升高，抑制miR-485-3p的表达后NCOA4的表达量出现降低。研究证实，NCOA4是铁死亡正向调控因子，敲低NCOA4抑制了erastin诱导的铁死亡，而NCOA4的过表达促进了铁死亡 [21]。说明miR-485-3p可以正向调控NCOA4的表达影响肝癌细胞HepG2的铁死亡，这引起了我们的兴趣。我们推测miR-485-3p正向调控NCOA4的机制可能有两种。一是miR-485-3p在细胞核内与增强子结合后，激活了转录表达，使得NCOA4表达升高。二是miR-485-3p在细胞质内起作用，通过沉默或降低某种分子的表达，间接地使NCOA4表达升高。然而，由于围绕正向miRNA调控机制的研究刚刚起步，其生物学意义和具体功能仍需要进一步的研究证实。

5. 结论

综上，我们证实了miR-485-3p可以正向调控NCOA4的表达并最终影响HepG2细胞的铁死亡。但是对于miR-485-3p调控NCOA4的具体机制以及该通路是否受其他分子的调控，仍需要进一步的研究证实。我们期待更深一步的研究能为肝癌的治疗提供新的可能的方案。

基金项目

国家自然科学基金资助项目，项目编号：81802414。

文章引用

孙文胜,刘之谦,李新章,姜继康,李 杰. miR-485-3p调控肝癌细胞铁死亡的分子机制研究
Research on Molecular Mechanism of miR-485-3p Regulation on Ferroptosis in Hepatocellular Carcinoma Cells[J]. 临床医学进展, 2023, 13(03): 4320-4327. https://doi.org/10.12677/ACM.2023.133620

参考文献