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Asian Case Reports in Genetics
亚洲遗传病病例研究
, 2013, 1, 7-13
http://dx.doi.org/10.12677/acrg.2013.12002
Published Online May 2013 (http://www.hanspub.org/journal/acrg.html)
Progress on Artificially Induced Gynogenesis Research of
Fishes
*
Min Du
1,2
, Baozhen Niu
1,2
, Yanhong Liu
1,2#
1
College of Life Science and Technology, Honghe University, Mengzi, Yunnan
2
Key Laboratory of Crop High Quality and Efficient Cultivation and Security Control of College in Yunnan
Province, Honghe Univer
sity, Mengzi,
Yunnan
Email: du2005min@126.com, niu2011bao@126.com,
#
kidliu1968@126.com
Received: Mar. 18
th
, 2013; revised: Apr. 13
th
, 2013; accepted: Apr. 21
st
, 2013
Copyright © 2013 Min Du et al. This is an open access article di
stributed under the Creative Commons Attribution License, which
permits unre-
stricted use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
Abstract:
On the one hand, there is a significant value of fish sex control to production of aquaculture; on the other
hand, it provides a basis to explicit the mechanism of fish sex differentiation and sex determination. In briefly, the paper
introduces methods of fish sex-control, progress and future research direction of study on molecular markers concern
fish sex control and several molecular markers of gynogenesis.
Keywords:
Fishes; Sex-Control; Artificial Gynogenesis
鱼类人工雌核发育的研究进展
*
杜
民
1,2
,牛宝珍
1,2
,刘艳红
1,2#
1
红河学院生命科学与技术学院,云南蒙自
2
红河学院云南省高校农作物优质高效栽培与安全控制重点实验室,云南蒙自
Email: du2005min@126.com, niu2011bao@126.com,
#
kidliu1968@126.com
收稿日期:
2013
年
3
月
18
日;修回日期:
2013
年
4
月
13
日;录用日期:
2013
年
4
月
21
日
摘
要:
鱼类性别控制一方面对水产养殖具有重大的实用价值,另一方面为阐明鱼类性别分化和性别决定机制
等理论问题提供依据。
本文简述了鱼类性别控制的方法,介绍了鱼类性别控制及雌核发育相关的几种分子标记研
究的进展状况及研究方向。
关键词:
鱼类;性别控制;人工雌核发育
1.
鱼类性别控制概述
鱼类性别控制是通过人为手段对鱼类的生殖活动
进行干预按照人们的意愿来繁殖所需性别鱼类后代的
一种繁殖技术。性别控制时间分为受精之前和受精之
后。前者是通过对精子的体外干预,使在受精之时便
决定了后代的性别;后者是利用形态或者分子等手段
对幼鱼性别进行鉴定,从而获得特定性别的后代。广
义的性别控制还包括基因型雌性向生理型雄性转化,
基因型雄性向生理型雌性逆转以及不育中性鱼的诱导
方法等,影响鱼类性别分化的外部环境因素包括,温
度、盐度、
pH
值、水质、光照、食物丰度等,种群内
部因素也可能影响鱼类性别及其分化
[1,2]
。许多雌雄鱼
类之间的经济性状,如生长率和个体大小等存在显著
差异,因此通过控制性别的方法专门生产全雌或全雄
苗种进行单性养殖可以大大提高经济效益。例如罗非
鱼雄鱼比雌鱼生长明显要快得多,而比目鱼和鲑鱼则
*
资助项目:红河学院大学生创新项目。
#
通讯作者。
Copyright © 2013 Hanspub
7
鱼类雌核发育的研究进展
选择培养雌性
[3]
。
鱼类性别控制的方法和途径主要有人工挑选法,
种间杂交
[4]
,激素处理
[5]
,三系配套技术
[6]
,人工诱导
雌核发育
[7]
,人工诱导雄核发育
[8]
,人工诱导三倍体
[9,10]
,自身免疫阉 割
[11]
,外科手术阉割
[12]
,以及电离
辐射和化学绝育等方法。但比较有效的是种间杂交,
激
素处理,雌核发育和
三倍体的人工诱导等。此文仅对
鱼类的性别相关的雌核发育有关的分 子标记作一简述。
2.
鱼类人工雌核发育研究的种类
近三十年来,人工诱导鱼类雌核发育进展迅速,
目前国内外水产工作者通过人工诱导鱼类雌核发育,
已经成功地培育出雌核发育的后代:斑马鱼
(
Bra-
chydanio rerio
)
[7]
、金鱼
(
Carassius auratus
)
[13,14]
、虹鳟
(
Oncorhynchus mykiss
)
[15,16]
、牙鲆
[17-23]
、漠斑牙鲆
[24,25]
、
大黄鱼
(
Larimichthys crocea
)
[26-29]
、庸鲽
(
Hippoglossus
hippoglossus
)
[30]
、舌齿鲈
(
Dicentrarchus labrax
L.)
[31-34]
、大菱鲆
(
Scophthalmus maximus
)
[34,35]
、尖齿胡鲶
(
Clarias gariepinus
)
[36,37]
、细鳞大麻哈鱼
(
Oncorhynchus
gorbuscha
)
[38]
、半滑舌鳎
(
Cynoglossus semilaevis
)
[39]
、
黄颡鱼
(
Pelteobagrus fulvidraco Richardson
)
[40]
、建鲤
(
Cyprinus carpio Var. Jian
)
[41]
、平鲷
(
Rhabolosargus
sarba
)
[42]
、鲢
(
Hypophthalmichthys molitrix
)
[43]
、南方鲇
(
Silurus meridionalis
)
[44]
、丁 鲷
(
Tinca tinca
L.)
[45-47]
、泥
鳅
(
Misgurnus anguillicaudatus
)
[48]
、鲫鱼
(
Crucian carp
)
[49]
、条斑星鲽
(
Verasper moseri
)
[50,51]
、尼罗罗非鱼
(
Oreo-
chromis niloticus
L.)
[52]
、莫桑比克罗非鱼
(
Oreochromis
mossambicus
)
[53]
、锦 鲤
(
Ornamental carp
)
[54]
、稀有鮈鲫
(
Gobiocypris rarus
)
[55]
、草鱼
(
Ctenopharyngodon idell
)
[56,57]
、银大麻哈鱼
(
Oncorhynchus kisutch
)
[58]
、大西洋
鲑
(
Salmo salar
)
[59]
、硬头鳟
(
Salmo gairdneri
)
[60]
、香鱼
(
Plecoglossus altivelis
)
[61,62]
、真 鲷
(
Pagrus major
)
[63]
、北
美狗鱼
(
Esox masquinongy
)
[64]
、石鲽
(
Limanda yoko-
hamae
)
[65]
、高体鰟鮍
(
Rhodeus ocellatus
)
[66]
、异育银鲫
(
Carassius auratus gibelio
)
[67-69]
、琵琶鳟
(
Oncorhynchus
rhodurus
)
[70]
等,这些雌核发育后代为养殖新品种的开
发以及性别决定机制、单性生殖等基础生物学研究提
供了极为宝贵的素材。
3.
人工雌核发育的原理方法及应用
人工雌核发育是利用灭活的精子激活卵子,然后
再通过一些处理,使卵子本身的染色体加倍而形成二
倍体子代。在整个过程中,子代的遗传物质全部来自
卵子,故称为雌核发育。在人工雌核发育过程中,通
常采用抑制激活卵第二次成熟 分裂
(
减数分 裂
)
后期第
二极体的形成和排出、形成杂合二倍体的减数雌核发
育方式,而不采用抑制激活卵 第一次 卵裂
(
有丝分 裂
)
产生纯合二倍体的卵裂雌核发育方式;雌核发育是快
速建立纯系和控制性别的有效方法。例如性染色体为
XX-XY
配子类型的鱼类,雌核发育形成的二倍体子代
都是雌性。用灭活的异源精子形成的异精雌核发育的
二倍体雌鱼,有的在生长上有明显的优势
(
例如异育银
卿鱼
)
;用雌核发育技术与性反转手段相结合,可以获
得大量正常的全雌鱼
。
3.1.
τ
0
度量法温度休克处理参数方法的运用
τ
0
度量法是一种利用相对时值代替绝对时值来优
化温度休克处理参数的方法。该方法已被运用到锦鲤
的雌核发育诱导中
[54]
。赵晓勤等
[13]
引入相对胚龄
τ
0
作为计时单位,通过抑制第一次卵裂的起始时间,以
实现对金鱼雌核发育诱导过程中的卵子染色体加倍操
作进行处理参数优化的目的。研究表明,在固定热休
克处理温度下,热休克处理时间固定的前提下,用不
同预处理水温组的孵化率与正常仔鱼产量曲线都形成
一个单一的峰,验证了以
τ
0
单位度量热休克处理时机
的准确性以及该优化方法在鲤科鱼类雌核发育操作中
的通用性。
3.2.
冷冻精子用于人工雌核发育
Chen
et al
.
[39]
首次利用冷冻保存
4
年的鲈鱼冷冻
精子成功诱导了半滑舌鳎雌核发育。
Luckenbach et al.
(2004)
[71]
利用同源精子和异源的鲻
(
Mugil cephalus
)
精
子诱导漠斑牙鲆卵雌核发育获得了正常发育的二倍体
鱼苗。
Piferrera et al.(2004)
[34]
利用同源精子诱导大菱鲆
卵雌核发育。苏鹏志等
[72]
采用冷冻保存的鲈鱼精液解
冻后直接与大菱鲆卵进行杂交,发现单倍体实验组卵
与雌核发育二倍体实验组卵在发育过程中有明显的差
异,这种差异最早出现在
8
细胞期。单倍体胚胎头部
发育不正常,眼泡较小,身体短且扭曲较严重,从肌
节期开始沉积大量的黑色素颗粒。仔鱼孵化
1
周内单
倍体即全部死亡。与正常二倍体对照组相比较,证明
所得正常形态仔鱼即为雌核发育二倍体。
Cop
yright © 2013 Hanspub
8
鱼类雌核发育的研究进展
3.3.
人工雌核发育用于性别遗传机制分析
周丽青等
[73]
初步发现半滑舌鳎具异型性染色体,
其核型为
2n = 42
,单倍体为
n = 21
,并断定半滑舌鳎
性别决定类型为
ZW/ZZ
,
Chen et al
.
[39]
等利用分子生物
学技术证实半滑舌鳎性别决定类型为
ZW/ZZ
,雌性性
染色体基因型为
ZW
。李静等
[74]
,马洪雨等
[75]
分别采
用
AFLP
技术,利用选择性引物组合
(E-ACT/M-CAA)
从半滑舌鳎中筛选到一条雌性特异的
AFLP
标记。并成
功地将其转化为
SCAR(Sequence characterized ampli-
fied regions)
标记,该
SCAR
标记是雌性特异的,并可
用于半滑舌鳎个体遗传性别鉴定。
Chen et al
.
[76]
应用
AFLP
技术,
利用
64
对选择性引物组合对半滑舌鳎基因
组进行扫描,筛选到
7
个雌性特异标记;利用人工雌核
发育技术建立了半滑舌鳎遗传性别快速鉴定的
PCR
技
术。
Chen SL et al.
[77]
运用外源性雄性激素生产出伪雄
鱼
(
基因型为
ZW
而表现型为雄鱼
)
,通过
SCA R
标记可
以快速对所生产的鱼苗进行基因型鉴定,伪雄鱼与正
常的雌鱼交配产生出了基因型为
WW
的超雌鱼,为全
雌半滑舌鳎的生产创造了条件。
3.4.
人工雌核发育用于获得纯系
理论上雌核发育可获得纯合度较高的子代,孙效
文等
[78]
研究了鲤 和牙鲆经两 种雌核发育 操作获得 子
代的基因型纯合情况。结果显示:抑制第一次卵裂的
雌核发育可以得到纯合子,但比例并不是很高,如果
要利用此技术获得纯合个体,要经基因型分析来确证;
抑制第二极体的雌核发育技术基本上得不到纯合个
体,对多数物种来说得到的子代群体纯合度并不高于
全同胞自交得到的子代;两种雌核发育技术获得完全
纯合子代的难易与物种的遗传特性有一定的相关性,
要获得完全纯合的子代难度非常大。
4.
与性别有关的分子特异性标记
鱼类性别决定机制相当复杂,鱼类的表现型性别
首先是由基因型决定,也受环境因子影响。鉴于鱼类
的性别决定机制既有科学意义,又有实用价值,一直
受到关注。采用分子标记技术筛选鱼类性别相关分子
标记已成为发展趋势之一。
目前筛选到的性别特异分子标记大都是雄性特异
的,我国已研究过的具有异型性染色体的
15
种鱼类,
有
12
种是雌性同配性别
[79]
,由于不同鱼类的遗传差
异很大,其性别特异性标记一般不能通用,因此鱼类
应该分离筛选各自性别特异的分子标记
[80-82]
。
4.1. AFLP(Amplified Fragment Length
Polymorphism
,扩增片段长度多态性
)
技术
在性别控制上的运用
目前利用
AFLP
技术筛选性别特异标记的报道有
淡水鱼三棘刺鱼
(
Gasterosteus aculeatus
L.)
[83]
和孔雀
鱼
(
Poecilia reticulata
)
[84]
,而且筛选到与雄性性别相关
的分子标记。
Chen SL et al.
[76]
从
DNA
水平出发,利用
AFLP
技术建立了半滑舌鳎雌性性相关遗传性别鉴定
的
PCR
技术。为研究半滑舌鳎性别决定机制、筛选具
有性别特异功能的基因、以及全雌育种等奠定了重要
基础。王晓清等
[27]
采用
AFLP
标记对人工雌核发育大
黄鱼的两个家系比较分析表明,雌核发育个体之间的
遗传差异最小,与雌亲的亲缘关系最近。研究表明,
AFLP
技术是鱼类雌核发育鉴定和遗传分析的有效方
法之一。
4.2. SSR(Simple Sequence Repeats
,简单序列重
复标记
)
技术在雌核发育上的运用
刘晓锋等
[85]
利用微卫星序列对雌核发育银鲫的
研究表明:雌核发育银鲫的突变率明显偏高,这与天
然雌核发育鱼类处在单性生殖和两性生殖的过度阶段
有密切关系;序列分析表明,雌核发育银鲫的微卫星
突变模式并不严格遵守逐步突变模型;季旭等
[20]
利用
微卫星标记对雌核发育牙鲆进行亲子鉴定,其中部分
子代在某些座位表现出与其母本不完全匹配的基因
型。朱晓琛等
[19]
采用微卫星标记对稚鱼期雌核发育牙
鲆的纯合度进行检验,发现卵裂雌核发育牙鲆在检测
座位全部纯合,但减数雌核发育牙鲆中未发现在所有
座位是全部纯合的。周裕华等
[43]
采用鲢微卫星引物,
以野生鲢、养殖鲢、雄鲤作对照对人工雌核发育鲢近
交
F2
及其亲本进行了微卫星分析。表明人工雌核发
育鲢近交
F2
发生了一定程度的遗传分化,采用人工
雌核发育、近交等育种手段会造成群体之间发生遗传
变异,群体间遗传结构发生改变。鲁翠云等
[86]
对雌核
发育银鲫特异个体及父母本
5
个微卫星位点的扩增条
带进行了克隆测序,相似性比对结果显示,特异个体
Cop
yright © 2013 Hanspub
9
鱼类雌核发育的研究进展
表现出父本特异
DNA
条带,在某些位点上保留有母
本特异条带,而个体本身特异的
DNA
条带与父母本
的相似性均较高。连续
2
代的繁育检测结果表明融合
了父本特异条带的银鲫个体在繁殖过程中仍行雌核发
育的生殖方式,变异条带能够传递给子代。王晓清等
[26]
采用 微卫星标 记引物对大 黄鱼雌核发 育的两个 家
系及对照组进行比较分析表明:有两条引物扩增结果
显示子代全部为雌核发育产物,雌核发育使基因的纯
合率提高了
81.9%
。研究表明雌核发育是促进基因纯
合的一个有效途径,微卫星标记技术是鱼类雌核发育
鉴定和遗传分析的一种有效方法。
4.3. RAPD(Random Amplified Polymorphic
DNA
,随机引物扩增多态性
DNA)
技术在雌
核发育上的运用
赵如榕等
[58]
采用多个随机引物进行
RAPD-PCR
扩增,对两个人工雌核发育草鱼群体进行遗传纯合性
分析表明:人工雌核发育草鱼群体的遗传纯合度高于
普通草鱼,第一代人工雌核发育草鱼群体的遗传纯合
性较第二代低;胡海星等
[87]
用
RAPD
和微卫星技术对
经两代连续人工诱导,遗传背景一致的雌核发育草鱼
以及母本草鱼和父本鲤鱼的基因组
DNA
进行比较分
析,两种方法在雌核发育草鱼和鲤鱼中所检测到的位
点均没有一个相同,表明经过紫外线照射处理,鲤鱼
精子的遗传物质能够被完全破坏,不会对雌核发育草
鱼的基因组造成遗传污染;刘良国等
[88]
采用随机扩增
多态
DNA
技术,对彭泽鲫种群内两个不同雌核发育
克隆进行比较分析,表明同一雌核发育克隆群体间遗
传相似性和不同克隆群体间的遗传异质性,找到两个
雌核发育克隆系的有效多态性标记。颜金鹏等
[89]
在对
异源四倍体鲫鲤雌核发育后代及其亲本
RAPD
分析中
表明异精雌核发育后代的遗传物质与母本相同。
4.4.
同工酶技术在雌核发育上的运用
赵俊等
[90]
分别用母本彭泽鲫和父本尖鳍鲤的精
子与复合四倍体彭泽鲫的卵子受精,得到
2
种胚胎的
后代群体。对
2
种胚胎
10
个时期的
5
种同工酶进行比
较分析表明:不同来源的精子对胚胎的同工酶表型没
有影响;复合四倍体彭泽鲫可能继承了母本种的雌核
发育生殖方式;邹桂伟等
[91]
采用聚丙烯酰胺水平平板
电泳法研究了人工雌核发育鲢近交的两个系、野生鲢、
养殖鲢和雄鲤的肝、肾、心、眼和肌肉
5
种组织的酯
酶和乳酸脱氢酶;表明雌核发育鲢近交的两个家系和
野生鲢的同工酶谱基本一致;多态现象出现在雌核发
育近交鲢
F1
Ⅱ系的群体内;鲢各群体的特异遗传标记
没有发现。原因可能是雄鲤的酶溶液浓度过低,或者
是雄鲤不适合用水平平板电泳法检测;也可能是点突
变引起的氨基酸转换不能用常规酶谱技术进行识别,
也可能是常规电泳分辨率有限的原因,导致不能从蛋
白质水平上对雌核发育近交鲢Ⅰ系、Ⅱ系和养殖鲢、
野生鲢进行区别。
4.5.
蛋白质组表达水平对雌核发育的研究
张玲等
[92]
对不同发育时期金鱼单倍体胚胎进行
雌核发育单倍体的差异蛋白质组研究。质谱分析初步
鉴定到了
15
个在金鱼雌核发育单倍体的发育中起着
重要作用的不同蛋白质;为进一步阐明单倍体发育机
制奠定了基础。杨彦豪等
[93]
通过对雄性银鲫精液的不
同组份在荷包红鲤和雌性银鲫杂交作用分析表明,与
比对照组相比,加入同源精子膜蛋白后的雌核发育银
鲫异源受精卵的孵化率显著下降,并且存在有基因型
基本和父本基因型相同的特殊子代。从而表明雌核发
育银鲫卵子进行雄核发育的关键因素可能与精子膜蛋
白有关。
5.
展望
人工诱导雌核发育在鱼类养殖中的应用已取得了
一定的进展,但也存在一些问题。雌核发育成功并真
正传至子代并稳定遗传的较少,同源或者异源精子遗
传物质是否彻底失活,缺少从亚基因或者更高的水平
上对雌核发育机制进行研究,利用分子手段对雌核发
育分析的较多,但是真正用在生产上的准确的鉴定方
法还是太少,对精子的生理、生化方面的基础研究也
比较少,单倍体鱼类的相关研究较少,并且需要有新
的假说来对雌核发育的基本原理进行丰富和完善。
对于雌核发育的超雌
(WW)
及超雄
(YY)
鱼的检测
技术还要进行深入的研究,目前检测的方法有利用流
式细胞仪来确认单倍体,利用染色体银染技术,染色
体
-G
带技术,染色体
-C
带技术,来确认正常二倍体
及雌核发育二倍体,但是只能对于小规模的检测。利
用性别特异性连锁基因的鉴定来确认异型配子染色体
是一个可行的方法,但是有的鱼类的与性别相关基因
Cop
yright © 2013 Hanspub
10
鱼类雌核发育的研究进展
还没有发现。通过分子探针进行杂交可否进行还在探
索中,如何利用分子手段快速鉴定基因型为
WW
的
YY
鱼将成为目前的一个有意义的研究方向。而利用
卵裂雌核发育后代的纯系可以进行鱼类遗传连锁图谱
的构建也将成为今后研究的一个热点。
参考文献
(References)
[1]
C. A. Strüssmann, R. Pati
ň
o. Temperature manipulation of sex
differentiation in fish. F. W. Goetz, P. Thomas, Eds., Proceedings
of the Fifth International Symposium on Reproductive Physiol-
ogy of Fish, University of Texas at Austin, Austin, 7-12 July
1995: 153-157.
[2]
R. H. Devlin, Y. Nagahama. Sex determination and sex differen-
tiation in fish: An overview of genetic, physiological, and envi-
ronmental influences. Aquaculture, 2002, 208(3): 191-364.
[3]
楼允东
,
宋天复
.
异育银鲫性别控制研究
[J].
水产学报
, 1994,
18(3): 169-175.
[4]
C. F. Hickling. The
Malacca tilapia
hybrids. Genetics, 1960,
57(1): 1-10.
[5]
S. Gimeno, A. Gerritsen, T. Bowmer and H. Komen. Feminiza-
tion of male carp. Nature, 1996, 384: 221-222.
[6]
杨永铨
.
应用三系配套途径生产遗传上全雄莫桑比克图非鱼
[J].
遗传学报
, 1980, 7(3): 241-246
[7]
G. Streisinger, C. Walker, N. Dower, et al. Producton of clones of
homozygous diploid zebra fish (
Brachydanio rerio
). Nature,
1981, 291(5813): 293-296.
[8]
A. B. J. Bongers, J. A. Boza, B. Z. Doulabi, E. H. Eding, J. Ko-
men and C. J. J. Richter. Maternal influence on development of
androgenetic clones of common carp,
Cyprinus carpio
L. Aqua-
culture, 1995, 137: 139-147.
[9]
M. Krisfalusi, P. A. Wheeler, G. A. Thorgaard, et al. Gonadal
morphology of female diploid gynogenetic and triploid rainbow
trout. Journal of Experimental Zoology, 2000, 286(5): 505-512.
[10]
桂建芳等
.
人工三倍体水晶彩鲫的性腺发育
[J].
动物学报
,
1991, 37(3): 297-304.
[11]
吴清江
.
鱼类的
H-Y
抗原及其意义
[J].
水产学报
, 1985, 9(4):
389.
[12]
L. H. Brown, R. H. Richard. Surgical gonadectomy of fish, a
technique for veterinary surgeons. Veterinary Record, 1979, 104:
215.
[13]
赵晓勤
,
李家乐
,
汪桂玲
.
金鱼
雌核发育诱导的
τ
0
度量法优
化
[J].
上海水产大学学报
, 2008, l17(5): 520-524.
[14]
H. Nagoya, T. Kimoto and H. Onozato. Diploid gynogenesis
induced by suppression of the second or the third cleavage in the
goldfish,
Carassius auratus
. Bulletin of National Research Insti-
tute of Aquaculture, 1990, 18: 1-6.
[15]
李胜忠
,
陈琳
,
杜劲松
.
热休克诱导虹鳟二倍体雌核发育
[J].
动物学杂志
, 1997, 32(5): 7-9.
[16]
S. Kyle, H. B. Kim, E. D. Robert, et al. Genetic analysis of a
development rate QTL in backcrosses of clonal rainbow trout,
Oncorhynchus mykiss
. Aquaculture, 2005, 247: 75-83.
[17]
戈文龙
,
张全启
,
齐洁等
.
异源精子诱导牙鲆雌核发育二倍
体
[J].
中国海洋大学学报
, 2005, 35(6): 1011-1016.
[18]
王伟
,
尤锋
,
高天祥等
.
人工诱导牙鲆异质雌核发育群体的
微卫星标记分析
[J].
高技术通讯
, 2005, 15(7): 107-110.
[19]
朱晓琛
,
刘海金
,
孙效文等
.
微卫星评价牙鲆雌核发育二倍
体纯合性
[J].
动物学研究
, 2006, 27(1): 63-67.
[20]
季旭
,
孙效文
,
杨立更等
.
微卫星标记对牙鲆有丝分裂雌核
发育家系的亲子鉴定
[J].
动物学研究
, 2008, 29(1): 25-30.
[21]
刘海金
,
王常安
,
朱晓琛等
.
牙鲆单倍体、三倍体、雌核发育
二倍体和普通二倍体胚胎发育的比较
[J].
水
产学院学报
,
2008, 23(3): 161-167.
[22]
X.-P. Zhu, F. You, P.-J. Zhang, et al
.
Effects of cold shock on
microtubule organization and cell cycle in gynogenetically acti-
vated eggs of olive flounder (
Paralichthys olivaceus
). Marine
Biotechnology, 2007, 8(3): 312-318.
[23]
E. Yamamoto. Studies on sex-manipulation and production of
cloned populations in hirame,
Paralichthys olivaceus
(Tem-
mincket Schlegel). Aquaculture, 1999, 173(1): 235-246.
[24]
J. M. Andrew, M. Ryan, A. Christopher, et al. Effective UV dose
and pressure shock for induction ofmeiotic gynogenesis in
southern flounder (
Paralichthys lethostigma
) using black sea
bass (
Centropristis striata
) sperm. Aquaculture, 2006, 259: 290-
299.
[25]
J. L. Adam, G. John, V. D. Harry, et al
.
Induction of diploid gy-
nogenesis in southern flounder (P
aralichthys lethostigma
) with
homologous and heterologous sperm. Aquaculture, 2004, 237
(1-4): 499-516.
[26]
王晓清
,
王志勇
,
柳小春等
.
大黄鱼人工诱导雌核发育后代
的微卫星标记分析
[J].
遗传
, 2006, 28(7): 831-837.
[27]
王晓清
,
王志勇
,
柳小春等
.
人工雌核发育大黄鱼
(
Pseudo-
sciaena crocea
)
的
AFLP
分析
[J].
海洋与湖沼
, 2007, 38(1): 22-
28.
[28]
Y. Y. Li, M. Y. Cai, Z. Y. Wang, et al. Microsatellite-centromere
mapping in large yellow croaker (
Pseudosciaena
crocea
) using
gynogenetic diploid families. Marine Biotechnology, 2008, 10:
83-90.
[29]
许建和
,
尤锋
,
吴雄飞等
.
大黄鱼雌核发育二倍体的人工诱
导
[J].
海洋科学
, 2006, 30(12): 37-42.
[30]
H.
B. Tvedt, T. J. Benfey, D. J. Martin-Robichaud, et al. Gyno-
genesis and sex determination in atlantic halibut (
Hippoglossus
hippoglossus
). Aquaculture, 2006, 252: 573-583.
[31]
B. Daniela, C. Fulvio, L. Angelo, et al. Production of clonal
founders in the European sea bass,
Dicentrarchus labrax L.
, by
mitotic gynogenesis. Aquaculture, 2005, 246(1): 115-124.
[32]
P. Stefno, C. Beatrice, S. Eric, et al. Production of meiotic gyno-
genetic and triploid sea bass,
Dicentrarchus labrax L
. 1. Per-
formances, maturation and carcass quality. Aquaculture, 2004,
230: 41-64.
[33]
P. Stefano, C. Beatrice. Pressure and cold shock induction of
meiotic gynogenesis and triploidy in the European sea bass,
Dicentrarchus labrax L
.: Relative efficiency of methods and pa-
rental variability. Aquaculture, 2000, 189(1): 23-37.
[34]
F. Piferrera, M. C. Rosa, G. Castora, et al. Induction of gyno-
genesis in the turbot (
Scophthalmus maximus
): Effects of UV ir-
radiation on sperm motility, the Hertwig effect and viability dur-
ing the first 6 months of age. Aquaculture, 2004, 238(1-4): 403-
419.
[35]
J.-H. Xu, F. You, W. Sun, et al. Induction of diploid gynogenesis
in turbot
Scophthalmus maximus
with left-eyed flounder
Para-
lichthys olivaceus
sperm. Aquaculture International, 2008, 16(6):
623-634.
[36]
G. Peter, V. Fam and O. Frans. Gynogenesis in the African cat-
fish
Clarias gariepinus
(Burchell, 1822) III. Induction of en-
domitosis and the presence of residual genetic variation. Aqua-
culture, 2000, 185: 25-42.
[37]
L. Várad, I. Benkó, J. Varga, et al. Induction of diploid gyno-
genesis using interspecific sperm and production of tetraploids in
African catfish,
Clarias gariepinus
(Burchell 1822). Aquaculture,
1999, 173(1-4): 401-411.
[38]
P. A. Crandell, P. Matsuokam and W. Smokerw. Effects of timing
of stripping and female on the viability of gynogenetic and non-
gynogenetic diploid pink salmon (
Oncorhynchus
gorbuscha
).
Aquaculture, 1995, 137(1): 109-119.
[39]
S.-L. Chen, Y.-S. Tian, J.-F. Yang, et al.
Artificial gynogenesis
and sex determination in
half-smooth tongue sole (
Cynoglossus
semilaevis
)
.
Mar Biotech, 2009,
10(2): 243-251.
[40]
刘汉勤
,
崔书勤
,
侯昌春等
.
从
XY
雌鱼
雌核发育产生
YY
超
雄黄颡鱼
[J].
水生生物学报
, 2007, (31)5: 718-725.
[41]
张建森
,
孙小异
.
建鲤综合育种技术的公开和分析
[J].
中国
Cop
yright © 2013 Hanspub
11
鱼类雌核发育的研究进展
水产
, 2006, 9: 69-71.
[42]
蔡泽平
,
胡超群
,
牛文涛等
.
平鲷雌核发育二倍体的人工诱
导
[J].
海洋学报
, 2007, 29(3): 114-119.
[43]
周裕华
,
邹桂伟
,
梁宏伟等
.
人工雌核发育鲢近交
F2
微卫星
DNA
变异分析
[J].
淡水渔业
, 2007, 37(4): 30-33.
[44]
吴风瑞
,
张修月
,
王德寿
.
人工诱导南方鲇雌核发育的最适
参数
[J].
动物学杂志
, 2006, 41(1): 27-31.
[45]
V. Pia
č
ková, M. Flajšhans. Long-term examination of health
conditions in monoculture of communally tested amphimictic
diploid,diploid gynogenic and triploid tench,
Tinca tinca
(
L
.).
Aquaculture International, 2006, 14: 43-59.
[46]
O. Linhart, P. Kvasnicka, J. Kanka, et al. The first results of
induced gynogenesis by retention of the second polar body in
common tench (
Tinca tinca L.
). Bulletin Vyzkumny Ustav Ry-
barsky a Hydrobiologicky Vodnany, 1986, 22(4): 3-8 (in czech).
[47]
J. X. Wang, H. J. Liu, W. Q. Min, et al. Induced meiotic gyno-
genesis in tench,
Tinca
tinca
(
L
.) using irradiated heterogenic
sperm. Aquaculture International, 2006, 14: 35-42.
[48]
K. Morishima, I. Nakayama and K. Arai. Genetic linkage map of
the loach
Misgurnus anguillicaudatus
(Teleostei: Cobitedae).
Genetica, 2008, 132: 227-241.
[49]
S. J. Liu, W. Duan, M. Tao, et al. Establishment of the diploid
gynogenetic hybrid clonal line of red crucian carp × common
carp. Science China Life Science, 2007, 50(2): 186-193.
[50]
Z. Lahrech, C. Kishioka and K. Morishima. Genetic verification
of induced gynogenesis and mi
crosatellite-centromere mapping
in the barfin flounder,
Verasper moseri
. Aquaculture, 2007, 272
(Suppl. 1): S115-S124.
[51]
杨景峰
,
陈松林
,
苏鹏志等
.
异源
精子诱导条斑星鲽雌核发
育的研究
[J].
水产学报
, 2009, 33(3): 372-378.
[52]
M. T. Ezaz, J. M. Myers, S. T. Powell, et al. Sex ratios in
theprogeny of androgenetic and gynogenetic YY male Nile tila-
pia,
Oreochromis niloticus L
. Aquaculture, 2004, 232: 205-214.
[53]
R. Campos-Ramos, S. C. Harvey, B. J. McAndrew, et al. Anin-
vestigation of sex determination in the Mozambique tilapia,
Oreochromis mossambicus
, using synaptonemal complex analy-
sis, FISH, sex reversal and gynogenesis. Aquaculture, 2003, 221:
125-140.
[54]
N. B. Cherfas, G. Hulata and O. Kozinsky. Induced diploid gy-
nogenesis and polyploidy in the ornamental (koi) carp,
Cyprinus
carpio L
. 2. Timing of heat shock during the first cleavage.
Aquaculture, 1993, 111(1-4): 281-290.
[55]
贾方钧
,
王剑伟
,
吴清江
.
异源精子诱导稀有鮈鲫的人工雌
核发育
[J].
水生生物学报
, 2002, 26(3): 246-252.
[56]
李冰霞
,
罗琛
.
热休克法抑制第一次卵裂实现草鱼雌核发育
的细胞学观察
[J].
水生生物学报
, 2003, 27(2): 154-159.
[57]
赵如榕
,
肖亚梅
,
彭亮跃等
.
两个人工雌核发育草鱼群体遗
传纯合性分析
[J].
湖南师范大学自然科学学报
, 2008, 31(2):
110-114.
[58]
T. Refstie, J. Stoss and E. M. Donaldson. Productionof all-female
coho salmon (
Oncorhynchus kisutch
) by diploid gynogenesis
using irradiated sperm and cold shocks. Aquaculture, 1982, 29
(1-2): 67-82.
[59]
A. Slettan, I. Olsaker and Y. Lie. Segregation studies and linkage
analysis of Atlantic salmon microsatellites using haploid genetics.
Heredity, 1997, 78(6): 620-627.
[60]
D. Chourrout.
Thermal induction of diploid gynogenesis and
triploidy in the eggs of the rainbow trout (
Salmo gairdneri
Richardson). Reproduction Nutrition Development, 1980, 20(3A):
727-733.
[61]
H.
S. Han, N. Taniguchi and A. Tsujimura. Production of clonal
ayu by chromosome manipulation and confirmation by isozyme
marker and tissue grafting. Nippon Suisan Gakkaishi—Bulletin
of the Japanese Society of Scien
tific Fisheries, 1991, 57(5): 825-
832.
[62]
M. Takagi, N. Taniguchi, M. Yamasaki, et al. Identification of
clones induced by chromosome manipulation in ayu,
Plecoglos-
sus altivelis
, by DNA fingerprinting with ri and non-ri labelled
probes. Fisheries Science, 1995, 61(6): 909-914.
[63]
K. Kato, O. Murata, S. Yamamoto, et al. Viability, growth and
external morphology of meiotic- and mitotic-gynogenetic dip-
loids red sea bream,
Pagrus major
.
Journal of Applied Ichthyol-
ogy
, 2001, 17(3): 97-103.
[64]
F. Lin, K. Dabrowski. Andr
ogenesis and homozygous gynogene-
sis in muskellunge (
Esox
masquinongy
): Evaluation using flow
cytometry. Molecular Reproduction and Development, 1998, 49:
10-18.
[65]
Y. Kakimoto, S. Aida, K. Arai, et al. Induction of gynogenetic
diploids by temperature and pressure treatments and sex reversal
by immersion in methyltestosterone in marbled sole
Limanda
yokohamae
. Journal of the Faculty of Applied Biological Science
—Hiroshima University, 1994, 33: 113-124.
[66]
K. Kawamura. Sex determination system of the rosy bitterling,
Rhodeus ocellatus ocellatus
.
Environmental Biology of Fishes,
1998, 52: 251-260.
[67]
桂建芳
,
梁绍昌
.
人工
复合四倍体异育银鲫雌核发育生殖方
式的初步证明
[J].
科学通报
, 1992, 37(9): 836-836.
[68]
楼允东
,
宋天复
.
异育银鲫雌核发育子代性转化的研究
[J].
水产学报
, 1994, 18(3): 169-175.
[69]
李建中
,
刘少军
,
张轩杰等
.
异源四倍体鲫鲤雌雄差异的
RAPD
标记
[J].
水生生物学报
, 2004, 28(6): 674-676.
[70]
T. Kobayashi, A. Ide, T. Hiasa, et al. Production of cloned amago
salmon
Oncorhynchus rhodurus
. Fisheries Science, 1994, 60(3):
275-281.
[71]
J. A. Luckenbach, J. Godwin, H. V. Daniels, et al. Induction of
diploid gynogenesis in southern flounder (
Paralichthys le-
thostigma
) with homologous and heterologous sperm. Aquacul-
ture, 2004, 237: 499-516.
[72]
苏鹏志
,
陈松林
,
杨景峰等
.
异源冷冻精子诱导大菱鲆的雌
核发育
[J].
中国水产科学
, 2008, 15(5): 715-721.
[73]
周丽青
,
杨爱国
,
柳学周等
.
半滑舌鳎染色体核型分析
[J].
水
产学报
, 2005, 29(3): 417-419.
[74]
李静
,
陈松林
,
邓思平等
.
半滑舌鳎雌性特异
AFLP
分子标记
的筛选
[J].
水产学报
, 2007, 31(5): 591-597.
[75]
马洪雨
,
陈松林
,
李静等
.
半滑舌鳎雌性特异
AFLP
标记
CseF783
的克隆及其在遗
传性别鉴定中的应用
[J].
遗传
, 2009,
31(1): 88-94.
[76]
S. L. Chen, J. Li, S. P. Deng, et
al. Isolation of female-specific
AFLP markers and molecular identification of genetic sex in
half-smooth tongue sole (
Cynoglossus semilaevis
). Mar. Biotech.,
2007, 9(2): 273-280.
[77]
S.-L. Chen, S.-P. Deng, H.-Y. Ma, et al. Molecular marker-as-
sisted sex control in half-smooth tongue sole
Cynoglossus semi-
laevis.
Aquaculture, 2008, 283(1-4): 7-12.
[78]
孙效文
,
张研
,
季旭等
.
鲤和牙鲆的两种雌核发育子代的基
因型分析
[J].
水产学报
, 2008, 32(4): 545-550.
[79]
杨东
,
余来宁
.
鱼类性别与性别鉴定
[J].
水生生物学报
, 2006,
30(2): 221-226.
[80]
P. Iturra, J. F. Medrano, M. Bagley, et al. Identification of sex
chromosome molecular markers using RAPDs and fluorescent in
situ hybridization in rainbow trout. Genetica, 1997, 101(3): 209-
213.
[81]
P. Iturra, M. Bagley, N. Vergara,
et al. Development and charac-
terization of DNA sequence Omy P9 associated with the sex
chromosomes in rainbow trout. Heredity, 2001, 86: 412-419.
[82]
J. N. Volff, M. Kondo and M. Schartl. Medaka dmY/dmrt1Y is
not the universal primary sex-determining gene in fish. Trends
Gene, 2003, 19(4): 196-199.
[83]
R. Griffiths, K. J. Orr, A. Adam, et al. DNA sex identification in
the three-spined stickleback. Journal of Fish Biology, 2000, 57
(5): 1331-1334.
[84]
T. Watanabe, M. Yoshida, M. Na
kajima, et al. Linkage mapping
of AFLP and microsatellite DNA markers with the body color
and sex-determining loci in the guppy (
Poecilia reticulata
). Zo-
ological Science, 2005, 22(8): 883-889.
[85]
刘晓锋
,
鲁翠云
,
曹顶臣等
.
雌核发育银鲫微卫星突变速率
Cop
yright © 2013 Hanspub
12
鱼类雌核发育的研究进展
Copyright © 2013 Hanspub
13
和突变模式
[J].
遗传
, 2008, 30(4): 483-490.
[86]
鲁翠云
,
曹顶臣
,
张义凤等
.
雌核发育银鲫子代中微卫星特
异序列分析
[J].
动物学报
, 2007, 53(3): 537-544.
[87]
胡海星
,
郑康
,
陈金辉等
.
异源精子遗传物质对雌核发育草
鱼基因组的影响分析
[J].
水生生物学报
, 2008, 32(5): 701-710.
[88]
刘良国
,
赵俊
,
陈湘
.
彭泽鲫两个雌核发育克隆的
RAPD
分析
[J].
水生生物学报
, 2008, 32(2): 213-219.
[89]
颜金鹏
,
刘少军
,
刘筠
.
异源四倍体鲫鲤雌核发育后代及其
亲本
RAPD
分析
[J].
水生生物学报
, 2007, 31(6): 905-908.
[90]
赵俊
,
董成稳
,
庆宁等
.
复合四倍体彭泽鲫雌核发育生殖方
式的胚胎同工酶证据
[J].
华南师范大学学报
(
自然科学版
),
2007, 2: 98-113.
[91]
邹桂伟
,
郑蓓蓓
,
罗相忠等
.
酯酶和乳酸脱氢酶在人工雌核
发育鲢近交
F1
不同组织中的表达
[J].
淡水渔业
, 2006, 36(6):
12-15.
[92]
张玲
,
周新文
,
谢锦云等
.
金鱼雌核发育单倍体发育过程中
的比较蛋白质组学研究
[J].
中国生物工程杂志
,
2008, 28(8):
78-83.
[93]
杨彦豪
,
孙效文
,
雷清泉
.
精子膜蛋白在异精雌核发育银鲫
中的作用
[J].
上海水产大学学报
, 2006, 15(4): 488-492.