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Advances in Environmental Protection 环境保护前沿, 2013, 3, 115-121
http://dx.doi.org/10.12677/aep.2013.34020 Published Online October 2013 (http://www.hanspub.org/journal/aep.html)
Diversity Detection of Phytoplankton in Campus Lake—Taking
Siyuan Lake of Shanghai Jiao Tong University for Instance
Meiheriguli Mijiti, Nayila Mulati, Fengli Zhang*
Marine Biotechnology Laboratory, State Key Laboratory of Microbial Metabolism, School of Life Sciences & Biotechnology,
Shanghai Jiao Tong University, Shanghai
Email: *zhangfengli@sjtu.edu.cn
Received: Aug. 6th, 2013; revised: Sep. 2nd, 2013; accepted: Sep. 10th, 2013
Copyright © 2013 Meiheriguli Mijiti et al. This is an open access article distributed under the Creative Commons Attribution License, which permits
unrestricted use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
Abstract: Fresh-water algae, also called phytoplankton, are a natural and essential part of the ecosystem, and also con-
stitute the base of the aquatic food chain. The results of this survey showed that the water body of Siyuan Lake contains
25 species of phytoplankton which belongs to Diatoms, Yellow algae, Euglenophyta, Chlorophyta, Cyanophyta and
Chrysophyta. In the study, by PCR method, the mcy gene that encodes microcystin synthetase was used as a molecular
marker to detect the presence of microcystis producing microcystins and potential microcystin toxicity in Siyuan Lake.
The experimental results showed that the water of Siyuan Lake was slight-medium polluted. However, microcysis in the
water body didn’t produce microcystins. This study provides the basis not only for detection of aquatic pollution but
also for treatment of polluted Siyuan Lake.
Keywords: Phytoplankton; Microcystis; Microcystin
校园湖水藻类多样性检测——以上海交通大学思源湖为例
美合日古丽·米吉提,那依拉·木拉提,张风丽*
上海交通大学生命科学技术学院微生物代谢国家重点实验室海洋生物技术实验室,上海
Email: *zhangfengli@sjtu.edu.cn
收稿日期:2013 年8月6日;修回日期:2013年9月2日;录用日期:2013年9月10日
摘 要:藻类是地球上最重要的初级生产者,它们对维持水环境的生态平衡起着重要作用。本研究对上海交通
大学闵行校区内人工湖——思源湖水体检测发现,水样中共含有25 种淡水藻,分属硅藻门、黄藻门、裸藻门、
绿藻门、蓝藻门、金藻门 6个门。以编码微囊藻毒素合成酶基因 mcy 作为分子标记,通过聚合酶链反应(Polymerase
Chain Reaction, PCR)检测产毒微囊藻,从而检测水体中潜在的微囊藻毒素。研究结果显示:交大思源湖水体为
轻中度污染,水体中发现微囊藻,但水体中的微囊藻未非产毒微囊藻。本研究为上海交大校园湖水的检测与治
理提供依据。
关键词:淡水藻;微囊藻;微囊藻毒素
1. 引言
校园内人工湖水在一定程度上影响着师生员工
的日常生活环境和身体健康。思源湖是上海交通大学
闵行校区的美丽风景之一,她美丽的名字取自交大的
校训“饮水思源,爱国荣校”。她贯穿分布在整个交
大校园,水深约 5米,思源湖正在承受着污染的挑战。
*通讯作者。 近些年来,随着工农业生产的迅速发展和城市规
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校园湖水藻类多样性检测——以上海交通大学思源湖为例
模的扩大,大量工业污水和生活污水排入水体,使天
然水体的富营养化日益严重。富营养化的重要特征是
在夏季高温时期藻类大量滋生,形成绿色丝带状的水
华[1-3]。目前,淡水藻类污染己成为全球范围内日益严
峻的环境和公共卫生问题,其中蓝藻水华是淡水水体
中危害最严重的一类[3]。淡水藻类作为水体中的初级
生产者,分布广泛,适应性强,在水生生态系统食物
链中地位重要。藻类对污染毒物非常敏感,当污染物
以不同途径进入水体后,藻类将最先受到毒害。所以,
藻类可作为监测水质变化的测试生物。藻类不但应用
于水质监测,而且还能在去除水体中的氮、磷等营养
物质和污水中的有机物,净化污水中起重要作用[4,5]。
藻类检测日益受到人们重视。不同类型的水体或
同一水体的不同季节,藻类的组成是不相同的,各种
藻类的相对量在不断地变化[5]。除此之外,某些湖水
中存在潜在产毒蓝藻,产毒蓝藻分泌微囊藻毒素,被
微囊藻毒素(Microcystins, MCs)污染的饮用水和水产
品给人类健康带来了巨大威胁。微囊藻毒素是由蓝藻
水华,如固氮的鱼腥藻(Anabaena)、束 丝 藻(Aphanizo-
menon)、拟柱胞藻(Clindrospermopsis)、胶刺藻(Gloeo-
trichia)和节球藻(Nodularia),非固氮的微囊藻(Micro-
cystis)、颤 藻 (Oscillatoria)和鞘丝藻(Lyngbya)等暴发所
产生的一种常见的七肽单环肝毒素。微囊藻毒素对蛋
白磷酸酶 1和蛋白磷酸酶 2A 具有抑制作用,因此与
肿瘤促进作用有直接关系。由于微囊藻毒素毒性较
大,分布广泛,是目前研究较多的一族有毒化合物[6,7]。
目前对水体中藻毒素的检测技术研究还比较落
后。大多数的藻毒素使用价格昂贵、体积庞大的 HPLC-
MS 或GC-MS 检测,样品制备过程复杂、耗时长,需
要专业技术人员操作,检测费用很高,因此限制了常
规监测次数;而分子生物技术检测微囊藻毒素因其快
速、灵敏的特点越来越受到研究者的青睐[8,9]。研究表
明,与微囊藻毒素合成有关的基因有 3个(mcyA, mcyB,
mcyC),微囊藻毒素合成基因仅存在于产毒微囊藻藻
株,无毒的微囊藻藻株不含有该基因[10,11]。应用传统
方法,区分有毒还是无毒水华一直是水资源管理者碰
到的难题。本研究用微囊藻毒素合成基因特异性引
物,通过PCR 方法检测微囊藻毒素在水样中的分布,
为快速检测产毒和非产毒微囊藻提供了可行的技术,
为产毒水华的早期预报和防治提供了新的技术途径。
2. 材料与方法
为了研究交大闵行校区思源湖的水质情况,根据
水质的外观,选取交大东大门旁思源湖取样(见图 1)。
2.1. 采样
水深 0.5 m处使用有机玻璃水样采集器采 集水
样,采样量为 2L,采样日期 2012 年7月5号,7月
15 号,7月25 号。水样立即进行藻类富集与浓缩。
2.2. 藻样浓缩与鉴定
将采集的水样轻轻摇匀后,取 2L水样用 40目的
(a) (b)
Figure 1. Distribution of Siyuan Lake (a) and picture of water sampling location (b) (five-pointed star indicates sampling point)
图1. 思源湖在闵行交大分布(a)和采样点水貌(b)(五角星为采样点)
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筛网过滤,滤液经 5 µm孔径滤膜过滤,用 PBS 反复
冲洗含有藻细胞的滤膜,收集的藻细胞用于藻细胞观
察、鉴定及提取DNA。
2.3. 藻的计数
在每个计数框内选取四角及中央共 5个有代表性
的小格子观察并计数。单细胞以一个细胞为一个计数
单位,单细胞群体以一个群体为一个计数单位。
2.4. 藻细胞 DNA 的提取与 mcy 基因的 PCR
检测
用Qiagen DNeasy Plant mini Kit试剂盒提取收集
的藻细胞 DNA,步骤如下:1) 收集的藻细胞转入到
离心管,加入400 ul FAPG1 缓冲液到离心管中并猛烈
摇动,在 65℃水浴中加热 10 分钟;2) 加入130 μl
FAPG2缓冲液到溶解液中,冰上放置 5分钟;3)把溶
解液转入到过滤柱中,在12000 rpm离心 3分钟;4) 离
心后,抽取离心管中的藻细胞转入新的离心管中;5)
加入 1.5倍体积的 FAPG3 缓冲液到离心管中并充分混
匀;6) 转入 750 μl混合液到FAPG 微型柱中,离心 2
分钟,弃掉过滤液;7) 对剩下的混合液重复步骤6;
8) 加入500 μl W1 到柱中,离心 30 秒,弃掉过滤液;
9) 加入750 μl缓冲液,离心30秒;10) 把柱转入到
新的 1.5 ml的离心管中,加入预热的 50 μl洗脱缓冲
液,室温放置3分钟,再离心 2分钟,从而洗脱出
DNA。提取的 DNA,1%琼脂糖凝胶电泳,Goldview
染色后紫外观察。参考文献[9-11],设计微囊藻毒素 合
成酶基因 mcy 引物(表1)其中MSF/MSR 用来扩增
mcyA 基因,Tox1P/Tox1M,Tox3P/Tox2M,Tox7P/
Tox 3M,Tox4F/Tox4R 用来扩增 mcyB 基因。引物[12,13]
CYA106F:5’-CGGACGGGTGAGAACGCGTGA-3、
CYA781Ra:5’-GACTACTGGGGTATCTAATCCCATT-3’
作为对照可以扩增有毒和无毒微囊藻 16SrDNA 基因。
PCR 反应体系50 µl,其中引物各0.5 µM,TransStart
FastPfu DNA Polymerase酶2U(北京全式 金公司),
dNTP 各200 µM,模板 0.2 µg,1 × PCR buffer。PCR
反应参数:95℃ 5 min;94℃ 1 min,48℃ 1 min,72
℃ 1 min,30个循环;72℃ 10 min。扩增结束后,取
PCR 产物 2 µl,1%琼脂糖凝胶电泳,Goldview 染色
后紫外观察。将 PCR 产物用上海生工生物技术公司的
UNIQ-10柱按照操作指南进行纯化后与PUCm-T 载体
Table 1. Primers in the study used to PCR amplify microcystin
synthetase gene fragment
表1. 用于 PCR扩增微囊藻毒素基因片段的引物
Primer Sequence Reference
MSF 5’-ATCCAGCAGTTGAGCAAGC-3’ [7]
MSR 5’-TGCAGATAACTCCGCAGTTG-3’
Tox1P 5’-CGATTGTTACTGATACTCGCC-3’ [6,7]
Tox1M 5’-TAAGCGGGCAGTTCCTGC-3’
Tox3P 5’-GGAGAATCTTTCATGGCAGAC-3’ [6,7]
Tox2M 5’-CCAATCCCTATCTA ACACAGTACCTC
GG-3’
Tox7P 5’-CCTCAGACAATCAACGGTTAG-3’ [6,7]
Tox3M 5’-CGTGGATAATAGTACGGGTTTC-3’
Tox4F 5’-GGATATCCTCTCAGATTCGG-3’ [7]
Tox4R 5’-CACTAACCCCTATTTTGGATACC-3’
CYA106F 5’-CGGACGGGTGAGTAACGCGTGA-3’
CYA781Ra 5’-GACTACTGGGGTATCTAATCCCATT-3’
连接,转化大肠杆菌 DH5α,用PUCm-T 载体引物T7/
M13 进行PCR 扩增筛选重组克隆,对扩增结果阳性
的菌落提取质粒进行 16S rDNA测序(华大基因科技公
司)。在 http://blast.ncbi.nlm.n ih.gov/上采用序列同源性
比对。
3. 结果与讨论
3.1. 藻种分析与鉴定
取样点样品(三次取样)参考韩茂森《淡水浮游生
物图谱》
[14]。经鉴定统计,样品中藻浓度为藻细胞1266
个/mL。共有浮游藻类25种,分别隶属于硅藻门、黄
藻门、裸藻门、绿藻门、蓝藻门、金藻门。其中绿藻
门占所分到藻种的 54%,蓝藻门 7%,黄藻门 7%,裸
藻门 7%,金藻门 4%,可见绿藻门为优势种。主要种
为耐污种如蓝藻门的小球藻。
除了蓝藻(蓝细菌)外,其他藻类都是真核生物,
单细胞或者多细胞群体。根据韩茂林(1980)年的淡水
浮游生物图谱,思源湖水样中共检出 25种藻种(图2)。
硅藻为单细胞,具有高度硅质化的细胞壁,色素体为
黄褐色或黄绿色。硅藻是海洋浮游植物的主要组成
者,是海洋初级生产力的一个重要指标,许多属种对
某些水环境指标(如pH值、盐度、温度、营养盐等)
都有一定的最佳值及忍耐值,能很好地指示水环境的
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黄藻门‐蛇胞藻属 黄藻门‐小黄丝藻属 金藻门‐黄群藻属
蓝藻门‐蓝绿平裂藻 蓝藻门‐微囊藻属
绿藻门‐空星藻属绿藻门‐冠盘藻属 绿藻门‐集星藻属
绿藻门‐尖镰形纤维藻 绿藻门‐卵囊藻 绿藻门‐盘星藻属
绿藻门‐球囊藻 绿藻门‐实球藻 绿藻门‐小球藻
绿藻门‐四足十字藻
绿藻门‐四足十字藻 绿藻门‐四足十字藻
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绿藻门‐团藻属
绿藻门‐栅藻属 绿藻门‐栅藻属 绿藻门‐栅藻属
裸藻门‐囊裸藻属 裸藻门‐扁裸藻属
硅藻门‐脆杆藻属 硅藻门‐颗粒直链藻属 硅藻门‐菱形藻属
硅藻门‐螺旋形颗粒直链藻 硅藻门‐小环藻属 硅藻门‐星杆藻属
Figure 2. Algae morphology under light microscopy (400×)
图2. 浮游微藻光学显微镜照片(400×)
变化,包括湖泊的酸化和富营养化。法国水环境管理
机构已经将硅藻应用于河流、湖泊水质的评价[15]。样
品中有硅藻门直链藻属(Melosira)如图 2中的颗粒直
链藻(Melosira granulate)–螺旋形颗粒直链藻(Melo-
sira granulate Her)、小环藻属(Cyclotella)、脆杆藻属
(Fragilaria)、直链藻属(Melosira)、菱形藻属(Nitzschia)、
星杆藻属(Asterionella)。其中脆杆藻属(Fragilaria)和
小环藻 Cyclotella 是β-中污带的指示生物[16]。黄藻门
(Xanthophyceae)是一类属于不等鞭毛类的藻类生物,
色素体为黄绿色,大多数黄藻在纯净的贫营养的水体
中生长。样品中包括蛇胞藻属(Ophiocytium)和黄丝藻
属(Tribonema)的小黄丝藻(Tribonema. affin),其中小黄
丝藻(Tribonema. affin)是寡污带区的指示生物[16]。金藻
门(Chrysophyta)藻体为单细胞或集成群体,浮游或附
着,色素体金褐色、黄褐色或黄绿色,水体样品中有
黄群藻属(Synura),黄群藻属多生长在弱酸性或者中
性寡营养水体中。蓝藻门是原核细胞,细胞内只有原
始核,不具有核膜和核仁,没有叶绿体,细胞质内具
有膜结构的类囊体,内含叶绿素等光合色素,其代表
属有微囊藻属等,样品中含有平裂藻属(Merismopedia)
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蓝绿平裂藻和微囊藻属(Microcystis),其中微囊藻属是
β-中污带的指示生物[13]。绿藻形态多样,细胞壁主要
由纤维组成,多具有两根或多根顶生长鞭毛,常见有
盘藻属、小球藻属、栅藻属等。样品中含有空星藻属
(Coelastrum)–球状空星藻(Coelastrum sphaericum Na-
geli)、冠盘藻属(Stephanodiscus asteaea)、集星藻属
(Actinastrum)、纤维藻属(Ankistrodesmus)–尖镰形纤
维藻 (Ankistrodesmus falcatus)、卵囊藻属(Oocystis)、
盘星藻属(Pediastrum)、球囊藻属(Sphaerocysttis)、实
球藻属(Pandorina)、小球藻属(Chlorella)、十字藻属
(Crucigenia)四足十字藻(Crucigenia tetrapedia (Kirch.)、
栅藻属(Scenede smu s)、团 藻属 (Volvox),其中盘星藻属
(Pediastrum)和栅藻属(Sc ened esmu s)是α-中污带和 β-
中污带的指示藻类[13]。裸藻门生物因不具细胞壁而得
名,大多数为单细胞,代表属为囊裸藻属,裸藻对温
度的适应性强,大量繁殖时会形成“水华”,是水体
富营养化的指示生物,样品中含有囊裸藻属(Trache-
lomonas)裸藻门–扁裸藻属(Phacus),其中囊裸藻属
Trachelomonas 是β-中污带的指示藻类。根据藻的分
布断定,这一段水域处于轻中污带[16]。
3.2. 微囊藻毒素合成酶基因分析
以提取的藻细胞DNA 为模板(图3(a)),以表 1中
4对引物 MSF/MSR,Tox1P/Tox1M, Tox3P/Tox2M,
Tox7P/Tox3M, Tox4F/Tox4R PCR扩增mcyA 基因和
mcyB 基因,未见阳性条带出现(结果未显示),重复多
M 1
M 1
662bp
(a) (b)
Figure 3. Photo of algae DNA (a) and PCR detection of microcystin
synthetase gene and 16s rDNA gene. (a) M: λHi ndⅢ DNA Marker,
1: DNA of algae from water sampling, (b) M: DM2000 DNA
Marker, 1: 16Sr DNA gene product of microcystis by PCR ampli-
fication with CYA106F/CYA781Ra primers. The arrow indicates
the PCR gene fragment.
图3. 藻细胞 DNA(a)和微囊藻毒素合成基因及 16s rDNA基因的
PCR 检测(b),a) M: λHindⅢ DNA Marker,1:水样中藻细胞 DNA。
(b), M: DM2000 DNA Marker, 1: 微囊藻 16Sr DNA 基因 PCR 产
物,以 CYA106F/CYA781Ra 做引物。箭头所示基因扩增片段。
次;而以 CYA106F/CYA781Ra 为引物,扩增出 675 bp
阳性条带(图3(b)),经http://blast.ncbi.nlm.nih.gov /序
列比对,基因序列与 Oscillatoriales cyanobacterium
HOs24 的16S rDNA 序列 98%一致。因此,水样中微
囊藻为非产毒微囊藻。
4. 结论
藻类在水质监测评价和污水处理方面比传统的
理化方法更优越,可敏感、有效的预测外界环境的改
变,更综合直观的反应污染物对水环境的影响。通过
对上海交大思源湖水质藻类细胞的形态学鉴定,发现
思源湖中共有浮游藻类 25 种,分别隶属于硅藻门、
黄藻门、裸藻门、绿藻门、蓝藻门、金藻门。水样中
含有中污带的指示藻类,所以预测交大靠近东大门思
源湖中水质为轻中度污染。水样中的微囊藻喜欢在富
营养化水体中生活,当其大量繁殖时,会在水面形成
水华,同时还会使水体产生强烈的霉味[1,17]。另外,
有些微囊藻会产生微囊藻毒素,微囊藻毒素对人类生
命和健康造成巨大威胁,因此区分有毒还是无毒水华
一直是水资源管理者碰到的难题[15]。思源湖作为校园
的景观湖,它的周边没有农业污染区,工业污染区等
等。通过 PCR 检测我们发现,思源湖水样中不含微囊
藻毒素合成基因,所以水质是无微囊藻毒素的。
藻类指示更多地是一种定性的描述,难以进行定
量地说明和相应的水质标准,需要结合标准定量的实
验室化学检测方法,使得水质评价结果更加准确。由
于藻类的生活习性特点,利用藻类指示主要反应的是
中上层水质指标,需要结合其他物种同时对水环境进
行评估,而且提高仪器对藻类识别范围与准确性依然
是今后的研究重点。
本研究可对校园水生生态系统的污染,尤其是在
此方面的研究工作提供有效的参考。
5. 致谢
感谢上海交通大学文理交叉专项基金项目
(12JCY09)和上海交通大学 2011 年特色实验项目
(CE179)的经费支持。
参考文献 (References)
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