[目的]探讨北虫草多糖作为预防用免疫佐剂的可行性及效果。[方法]以ICR小鼠为模型,经模式抗原OVA免疫后,提取北虫草多糖粗多糖、分别从小鼠体液免疫和细胞免疫两方面进行分析,检测了ICR小鼠48只,随机分成6组,分别为生理盐水组、10 μg抗原组、10 μg抗原混合不同剂量(低、中、高)北虫草粗多糖粗提物以及10 μg抗原加上200 μg铝佐剂作为阳性对照组,小鼠间隔2周皮下免疫2次,二免后2周采血测定血清特异性IgG、IgG亚类、淋巴细胞转化水平检测、细胞因子(IFN-γ, IL-12, IL-4, IL-10) mRNA表达水平。[结果]中剂量组能显著提高血清特异性IgG抗体及亚类水平、特异性T淋巴细胞转化水平、增强小鼠机体Th1/Th2混合型细胞免疫反应(p < 0.05)。[结论]该研究首次证实将北虫草多糖与抗原物质联合使用,能有效提高机体对疫苗的免疫应答反应,将为进一步开发利用北虫草多糖提供科学依据。 [Objective] To study the feasibility and effect of Cordyceps militaris polysaccharides as immune adjuvant for prevention. [Method] ICR mice were immunized with OVA model antigen. Cordyceps militaris polysaccharides were extracted and analyzed from both humoral and cellular immunity of mice. Forty-eight ICR mice were randomly divided into six groups: saline group, 10 UG antigen group and 10 UG antigen mixed with different doses (low, medium and high). The crude polysac-charide extract, 10 UG antigen and 200 UG aluminium adjuvant were used as positive control group. The mice were subcutaneously immunized twice at 2 weeks interval. The serum specific IgG, IgG subclasses, lymphocyte transformation level, and the expression of cytokines (IFN-gamma, IL-12, IL-4, IL-10) were detected by blood sampling two weeks after immunization. [Result] The medium dose group could significantly increase the levels of serum specific IgG antibodies and subclasses, specific T lymphocyte transformation and Th1/Th2 mixed cell immune response in mice. [Conclusion] This study proved for the first time that the combined use of Cordyceps militaris polysaccharides and antigen substances can effectively improve the immune response of organisms to vaccines and provide scientific basis for further development and utilization of Cordyceps militaris polysaccharides.
占鹏飞,冯建琴,徐森华,钱伟红,施国方,张金卫
湖州市农业科学研究院,浙江 湖州
收稿日期:2019年10月6日;录用日期:2019年10月21日;发布日期:2019年10月28日
[目的]探讨北虫草多糖作为预防用免疫佐剂的可行性及效果。[方法]以ICR小鼠为模型,经模式抗原OVA免疫后,提取北虫草多糖粗多糖、分别从小鼠体液免疫和细胞免疫两方面进行分析,检测了ICR小鼠48只,随机分成6组,分别为生理盐水组、10 μg抗原组、10 μg抗原混合不同剂量(低、中、高)北虫草粗多糖粗提物以及10 μg抗原加上200 μg铝佐剂作为阳性对照组,小鼠间隔2周皮下免疫2次,二免后2周采血测定血清特异性IgG、IgG亚类、淋巴细胞转化水平检测、细胞因子(IFN-γ, IL-12, IL-4, IL-10) mRNA表达水平。[结果]中剂量组能显著提高血清特异性IgG抗体及亚类水平、特异性T淋巴细胞转化水平、增强小鼠机体Th1/Th2混合型细胞免疫反应(p < 0.05)。[结论]该研究首次证实将北虫草多糖与抗原物质联合使用,能有效提高机体对疫苗的免疫应答反应,将为进一步开发利用北虫草多糖提供科学依据。
关键词 :北虫草,粗多糖,免疫佐剂,活性
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北虫草(Cordyceps militaris)又名北冬虫夏草、蛹虫草,是虫草属的模式种菌,属子囊菌亚门虫草属,食用价值较高。现代研究发现,北虫草和冬虫夏草的药用价值及保健价值较相近 [
蛹虫草多糖具有耐热、盐,调节pH的作用 [
免疫佐剂是通过富集免疫原(如铝胶)、缓释免疫原(如油乳剂)、激活抗原提呈细胞单核吞噬细胞系统递呈抗原(如卡介苗、细菌脂多糖)以及多种综合作用(如不完全弗氏佐剂和完全弗氏佐剂)来实现对免疫原的免疫增强作用 [
雌性ICR小鼠,18~22 g,购自上海实验动物中心。小鼠饲养于22℃清洁环境,自由采食和饮水,自然光照,适应3 d后分组。
卵清白蛋白(OVA, grade V),美国sigma公司;羊抗小鼠IgG抗体,CHEM ICON Internati onal Inc.;TMB,SIG2MA-ALDR ICH公司;IgG2a,Santa CruzBi otechnol ogy Inc.;硅胶G 200~300目,青岛洋化工有限公司;D101中性大孔树脂,天津市海光化工有限公司产品。
木鳖子3000 g,用石油醚脱脂3次,每次10.5 L,共去掉脂质601.5 g。残渣用70%乙醇 60 ℃ 回流提取5次,每次12 L,合并提取液,减压浓缩至1.25 g/ml。
ICR小鼠35只随机分成7组,每组5只。每只小鼠颈部皮下注射含OVA (10 μg)和组分A、B、C、D、E或者ECMS (50 μg)的生理盐水溶液,对照组小鼠注射含OVA的生理盐水溶液。2周后进行二免,二免后3周采血,制备血清。
在96孔酶标板每孔加入 100 μL包被液(含5 μg OVA/mL的0.05 mol/L碳酸盐缓冲液),置 4 ℃ 孵育18 h后,洗涤液(pH 7.4磷酸盐缓冲液PBS)洗涤3次,每次3 min。每孔加入300 μL含1%小牛血清的PBS封闭液(0.01 mol /L, pH 7.4),于 37 ℃ 孵育1 h后,再用洗涤液洗涤3次,每次3 min。用稀释液将待测血清在酶标板上作二倍稀释,使血清稀释度为1:50~1:3 200。于 37 ℃ 孵育2 h后,用洗涤液洗涤3次,每次3 min。加入经1:500稀释的羊抗小鼠IgG抗体100 μL/孔,37℃孵育2 h,再用洗涤液洗涤3次,每次3 min。加入T MB底物溶液显色,100 μL/孔,37℃孵育15 min加1 mol/L H2 SO4 50 μL/孔终止反应。用酶标仪在450 nm波长测定OD值。
在已包被抗原OVA的96孔酶标板上加入1:800倍稀释的待检血清(100 μL/孔),37℃孵育1 h,用洗涤液洗涤3次,每次3 min。加入经1:600稀释的生物素标记的山羊抗小鼠IgG1或IgG 2a 100 μL/孔,37℃孵育1 h,用洗涤液洗涤3次,每次3 min。加入1:4000稀释的辣根过氧化物酶标记的抗生物素100 μL/孔,37℃孵育1 h,用洗涤液洗涤3次,每次3 min。加入TMB底物溶液显色,100 μL/孔,37℃孵育15 min加1 mol/L H2 SO4 50 μL/孔终止反应。用酶标仪在450 nm波长测定OD值。
将小鼠脱颈椎处死,75%酒精液浸泡5~10 min,无菌操作取小鼠脾脏,加入1 mL Hank’s研磨,研磨均匀后将脾细胞吹悬入平皿,过200目铜网后转移入10 mL离心管;25℃下1500 rpm离心10 min;PBS洗涤2次;细胞计数后,调整细胞浓度至2.5 × 106/mL,按100 µl/孔的量加入96孔细胞培养板中。用细胞培养液配制各种刺激物,向各孔中加入刺激物(LPS终浓度为5 µg/mL,ConA终浓度为7.5 µg/mL,设阴性对照和空白对照)。 37 ℃ 、5% CO2培养箱中培养48 h。在培养结束前4 h,每孔加入50 µl MTT (2 mg/mL)。然后将培养板取出,离心(1500 rpm, 10 min)沉淀细胞,轻轻倾去培养液上清,纸巾吸干。每孔加入150 µl二甲基亚砜,避光充分振荡,直至蓝色颗粒完全溶解,570 nm波长酶标仪检测OD值。计算淋巴细胞刺激指数(Stimulation index, SI):
SI = (刺激孔OD − 空白孔OD)/(未刺激孔OD − 空白孔OD)。
1) 脾淋巴细胞体外刺激。将述分离到的脾淋巴细胞悬液调整细胞浓度至1 × 107 cell/ml,铺板培养于24孔板,每孔2 ml。向培养板内加入刺激物(H1N1流感抗原),至HA终浓度为2 μg/ml,将细胞培养于37℃,5% CO2的环境中,抗原刺激15 h后离心收集细胞,加入RNA提取试剂溶解后保存细胞裂解液于−80℃。
2) Total RNA提取。RNAisoTMPlus (TaKaRa Co., Ltd.)提取细胞总RNA,方法参照厂家说明书。RNA提取效果电泳鉴定:使用1.5%的琼脂糖凝胶进行电泳分析。
3) 反转录。采用iScript cDNA Synthesis Kit将总RNA反转录成cDNA,方法见说明书;获得的cDNA样品置于−20℃保存备用。
4) 引物及探针设计。采用实时荧光定量双重PCR方法检测目的基因的相对表达量,以小鼠β-acting为内参基因,使用ABI 7300荧光定量PCR仪;目的基因探针 5’ 端以FAM标记,β-actin探针 5’ 端HEX标记,目的基因和内参基因 3’ 端均采用BHQ-1标记。引物和探针序列设计采用软件Primer Express 3.0;基因产物均经过DNA测序鉴定。
5) Real-time PCR反应体系及条件。采用总体积为25 μl的反应体系,依次加入1 × Taq-Man通用反应预混液、目的基因引物和探针、β-actin引物和探针(见表1)、cDNA模板(2 μl)。PCR反应程序采用标准TaqMan条件:95℃ (15 sec),60℃ (30 sec),45个PCR循环。
Gene | Sequences |
---|---|
ß-Actin | Forward: 5’-AGCGGTTCCGATGCCCT-3’ Reverse: 5’-AGAGGTCTTTACGGATGTCAACG-3’ Probe:5’HEX-TCCTTCTTGGGTATGGAATCCTGTGGC-BHQ-13’ |
IL-4 | Forward: 5’-GAGACTCTTTCGGGCTTTTCG-3’ Reverse: 5’-CAGGAAGTCTTTCAGTGATGTGG-3/ Probe: 5’FAM-CCTGGATTCATCGATAAGCTGCACC-BHQ-13’ |
IL-10 | Forward: 5’-CCAGTTTTACCTGGTAGAAGTGATG-3/ Reverse: 5’-CTTGCTCTTATTTTCACAGGGGAG-3/ Probe: 5’FAM-CAGGCAGAGAAGCATGGCCCAGAAA-BHQ-13’ |
IL-12p40 | IL-12p40 Forward: 5’-TTGCTGGTGTCTCCACTCATG-3/ Reverse: 5’-GTCACAGGTGAGGTTCACTGTTTC-3/ Probe: 5’FAM-CTGGACTCCCGATGCCCCTGG-BHQ-13/ |
IFN-γ | Forward: 5’-GCTTTGCAGCTCTTCCTCATG-3/ Reverse: 5’-CTTCCACATCTATGCCACTTGAG-3/ Probe: 5′FAM-CTGTTTCTGGCTGTTACTGCCACGGC-BHQ-13/ |
表1. 细胞因子及转录因子RT-PCR用引物和探针序列
6) 相对定量计算方法。设定荧光阈值(处于基因扩增信号的对数增长期(logarithmic phase)内的某个阀值(thresholds)被指定为Ct值),根据不同管内扩增曲线中对应荧光阈值确定样品Ct值。采用2-∆∆CT法(29)进行相对定量分析。
采用SPSS 12.0单因素方差分析方法比较组间均数差异,显著性水平设P < 0.05。
由图1可知,北虫草多糖佐剂组均高于抗原单独免疫组,而中剂量虫草多糖佐剂组与阳性对照组小鼠血清IgG抗体水平要显著高于抗原单独免疫组。由图2可知,北虫草多糖低剂量组小鼠血清中IgG1和IgG 2a 水均显著抗原单独免疫组小鼠,其它剂量多糖组在两种抗体亚类水平上均略高于抗原单独免疫组小鼠,铝胶仅能诱导Th2型免疫反应,而抗体亚类检测结果也反应出铝佐剂组小鼠仅有IgG1水平显著升高。
图1. 北虫草多糖佐剂对IgG抗体的影响
图2. 北虫草多糖佐剂对IgG抗体的影响
由图3可知,北虫草多糖佐剂组小鼠T/B淋巴细胞均被激活,尤其是中剂量组,对淋巴细胞的刺激指数显著高于抗原单独免疫组。本结果提示,北虫草多糖能有效激活机体免疫细胞,对机体细胞免疫反应有促进作用。
图3. 北虫草多糖佐剂对淋巴细胞转化的影响
图4. 北虫草多糖佐剂对细胞因子的影响
图5. 北虫草多糖佐剂对细胞因子IL-12的影响
由图4、图5、图6及图7可知,北虫草多糖粗提物佐剂组能有效诱导IFN-γ、IL-12、IL-4,尤其是中剂量多糖佐剂组,所诱导的各种细胞因子mRNA表达水平要显著高于抗原单独免疫组。铝佐剂仅能诱导Th2类细胞因子IL-4和IL-10 mRNA的表达。
图6. 北虫草多糖佐剂对细胞因子IL-10的影响
图7. 北虫草多糖佐剂对细胞因子IL-4的影响
北虫草多糖可与红细胞膜上的受体结合,促进巨噬细胞的吞噬功能。虫草多糖脂质体对体外培养的外周血淋巴细胞,可单独或协同PHA (植物血凝素)诱导IL-2受体的表达,促进可溶性IL-2的生成,但对PHA诱生的IL-2有选择性抑制作用,提示其有双向调节作用。沈敏等研究表明,虫草多糖能使胸腺中不成熟CD4、CD8双阳性细胞发育为成熟的单阳性细胞,从而增加胸腺中CD4+和CD8+的数量 [
由本实验结果可以推测北虫草多糖能有效提高机体的体液免疫应答和细胞免疫应答反应,北虫草多糖对Th1和Th2类细胞因子均有明显的提升左右,表明机体的免疫应答机制可能被激活,另外北虫草多糖可能对体液免疫和细胞免疫反应的平衡上具有一定的调节作用,能有效提高机体对疫苗的免疫应答反应。本实验结果与陈孜等关于人工虫草多糖对免疫抑制小鼠免疫调节作用的研究 [
国家蚕桑产业技术体系湖州综合试验站(CARS-18-SYZ06)。
占鹏飞,冯建琴,徐森华,钱伟红,施国方,张金卫. 北虫草多糖粗提物免疫佐剂活性研究Study on Immune Adjuvant Activity of Crude Extract of Cordyceps Militaris Polysaccharide[J]. 农业科学, 2019, 09(10): 919-926. https://doi.org/10.12677/HJAS.2019.910130